本帖最后由 wbqdssl 于 2026-2-3 10:44 编辑 ZLQ 发表于 2026-2-3 10:10 个人认为可以: 1)绿色部分表示配体RMSD,很平稳(美中不足的是最后10ns有上升趋势,可以考虑再做一次模拟看看,或者延长模拟时间,遇到某些严格的审稿人可能会质疑这一点),这表示配体总体构象比较稳定,说明结合的还可以。 2)图中右侧蛋白不参与配体的相互作用,而且距离左侧结合口袋较远,和左侧那部分蛋白就通过几个残基连着。右侧那部分确实可能有比较大的构象变化(甚至是周期性的翻转,则这种情况下蛋白的RMSD确实就是个波动的趋势,这是蛋白结构本身带来的),但对你分析蛋白配体作用的影响不大。而且你做了三次模拟,且又单独做了蛋白的模拟证明RMSD波动确实是由于右侧蛋白带来的,所以我认为RMSD虽然波动大但也是可以接受的。但我仍建议延长模拟时间,看看最后能不能到比较稳定的情况。当前100ns确实短了点,可能不够复合物结构稳定。 3)你可以再比较一下蛋白配体复合物的RMSD是不是比纯蛋白的小,如果是,也可以侧面说明配体的结合稳定了结合口袋附近的残基,使RMSD下降。 4)再结合MM-PBSA,-30kcal/mol不错了。如果你是20~100ns轨迹抽的frame做的,那说明这段时间内配体结合的不错。再结合氢键数量、氢键寿命、这些证据加起来,我想足够说明结合情况 注:当前文章投稿,如果是纯计算的文章,100ns的模拟时间99%被拒。可以考虑加到500ns(或300ns做三次replica)比较保险。如果是实验+计算,那也建议加到200ns. 如果想更稳健地通过计算说明配体结合强弱,再加absolute binding free energy(ABFE)则非常完美。 |
本帖最后由 ZLQ 于 2026-2-3 10:15 编辑 wbqdssl 发表于 2026-1-31 11:58 感谢老师的回复,我算了一下两者的mmpbsa,大概-30,结合能力较强,关于模拟蛋白配体的结合,是想确定二者结合的稳定性,大概就是类似于选择蛋白抑制剂的一个模拟判断;然后我跑了三次,都是蛋白不是很稳定,然后我就将蛋白重新提取出来跑了100ns,发现确实是蛋白在模拟过程中波动较大,想问一下这种情况该如何解决,能放在论文上面吗。我补充了单独蛋白100ns的rmsd和rmsf |
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本帖最后由 wbqdssl 于 2026-1-31 12:01 编辑 首先,补充信息应在原帖编辑,不应在下面继续回复。 1)RMSF看起来还行,RMSD可能确实是你说的,蛋白右侧那部分构象一直在变化导致RMSD波动。 2)对接得分没什么说服力,如果MD里结合不强那就是不强(前提是你MD的设置,参数等都合理)。 3)”但是两者之间也没有氢键结合就很奇怪“ 不要一上来就只关注氢键,影响蛋白-配体结合的除了氢键之外还有其他作用比如pi-pi stacking, pi-cation interaction等等。此外,还要看对接结果里,蛋白配体有没有非常明显的氢键。 4)”但是两者之间也没有氢键结合就很奇怪,因为对接打分在-12,就是按理两者作用应该很强才对“ 这种说法没什么因果关系,是典型的想当然的结论。对接得分好不证明MD里就能结合或相互作用就很强。对接看的只是个静态结构,您认为静态结构能说明问题还是MD这种考察动态行为的结果更准确? 5)具体如何解决,要看你进行MD模拟的目的是什么。 |
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