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[Amber] H++和propka3对HIS质子化为什么不同?

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楼主
各位大佬,对于同样的原始蛋白EstSC4-MHET0.pdb,EstSC4-MHET0.pdb是水解酶,最佳水解pH=9.0,HIS147 (原始蛋白编号)是催化三联体之一,采用H++和propka3质子化后,有两个HIS质子化结果不同,请问为什么不同,哪一种是正确的?非常感谢!

H++结果如下:

ATOM   2241  N   HIE   146      33.413  -9.168  -2.713  1.00  0.00           N   (PKa=4.7)
ATOM   2431  N   HIE   160      17.750 -16.312  -3.951  1.00  0.00           N  (PKa=7.8)

propka3质子化结果:

ATOM   2241  N   HID A 147      33.413  -9.168  -2.713 -0.4157 1.8240  (PKa=2.56)
ATOM   2431  N   HID A 161      17.750 -16.312  -3.951 -0.4157 1.8240   (PKa=4.95)




H++质子化过程:

# 1使用pdb4amber处理原始文件
pdb4amber -i EstSC4-MHET0.pdb -o EstSC4_proc.pdb --nohyd

# 2提取蛋白
grep "^ATOM" EstSC4_proc.pdb > protein.pdb

#  清理 CONECT记录
grep -v "^CONECT" protein.pdb > protein_fixed.pdb

#3 上传protein_fixed.pdb
http://newbiophysics.cs.vt.edu/H++/index.php

下载 0.15_80_10_pH9_protein_fixed.genpdb.cpptraj.pdb
echo "END" >>0.15_80_10_pH9_protein_fixed.genpdb.cpptraj.pdb



propka3质子化过程如下:

#1 然后用pdb4amber修复
pdb4amber -i EstSC4-MHET0.pdb -o EstSC4-MHET0_proc.pdb --nohyd

#2提取蛋白质部分(移除配体)
grep -v "^HETATM.*LIG" EstSC4-MHET0_proc.pdb > EstSC4-MHET0_protein.pdb

#3 清理 CONECT记录
grep -v "^CONECT" EstSC4-MHET0_protein.pdb  > EstSC4-MHET0_protein_fixed.pdb

#4 使用pdb2pqr30质子化蛋白质(pH 9.0)
pdb2pqr30 --ff=AMBER --ffout=AMBER --keep-chain --titration-state-method=propka --with-ph=9.0 EstSC4-MHET0_protein_fixed.pdb EstSC4-MHET0_protein_Hadded.pdb

#5 添加END记录
echo "END" >> EstSC4-MHET0_protein_Hadded.pdb


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发表于 Post on 2025-12-16 12:15:53 | 只看该作者 Only view this author
它们的背后理论不同。Propka 是empirical method,H++ 是solve PB equation。具体参考原文。

这篇综述 (https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC5662048/) 也比较了不同方法。

实际上还要看体系,有些 active site 根据机理会需要指定的质子化,要看该蛋白相关文献。
敬仰一针见血的指责,厌倦别有用心的赞美。

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 楼主 Author| 发表于 Post on 2025-12-16 17:27:22 | 只看该作者 Only view this author
用同一份完全一致的输入体系重复两套计算
要么都保留水/离子/辅因子,要么都去掉(推荐二者保持一致);并对缺失位点进行相同的补全处理。
保持相同的链ID与残基编号(避免比对偏移)。
固定关键邻近残基的质子化以匹配已知机理
对催化Asp(与His配对的那一位)保持去质子化(负电),对催化Ser保持中性羟基;然后仅在His上比较HID/HIE的判定。这样更能逼近真实催化几何。
结构几何判据
检查 His ND1–Ser Oγ 与 His NE2–Asp Oδ/ε 的距离与取向;若 ND1–Ser Oγ 是潜在H键(His作碱受体),而 NE2–Asp 是H键(His作供体),则选 HIE。
进阶方法
若要消除不确定性,可在常pH=9的条件下做短程常pH MD 或 在固定两种tautomer(HID vs HIE)下能量最小化/短MD,比较关键氢键占有率与势能,选择更稳定的一种用于生产计算。

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